Original Research Article

The Korean Journal of Crop Science. 30 September 2014. 252-262
https://doi.org/10.7740/kjcs.2014.59.3.252

ABSTRACT


MAIN

수수종자는 아프리카, 아시아를 포함한 반건조 열대 지역 에서 에너지원과 단백질원을 공급하는 주요 식량자원으로 이용되고 있으며(Belton & Taylor, 2004), 우리나라에서는 전통적으로 혼반용 또는 떡 등의 식량보조 식품으로 이용되 고 있다. 또한 최근에 수수의 건강 보조 및 증진 효과에 대 한 연구가 활발하게 진행되면서, 성인병의 대표적인 만성질 환인 당뇨, 및 노화에 대한 억제 효과가 우수하다는 결과가 보고되고 있다(Jeon et al., 2011; et al., 2009; Seo et al., 2011). 수수 종자에 함유된 주요한 건강 증진 물질로는 페놀 화합물 등의 식물체 이차 대사물질이 확인되고 있다(Dykes & Rooney, 2006).

혈당강하 관련 최근 국내 연구에서, 혈당강하 및 항산화 효과가 우수한 수수 ‘밀양 3호’가 개발되었으며, 수수 추출물 유래 fatty acid amides가 탄수화물 가수분해효소(α-amylase 와 α-glucosidase)에 대한 억제 효능이 우수하다고 보고되었 다(RDA, 2013). 또한 수수 추출물은 당뇨 동물모델에서 혈 당 및 콜레스테롤 강하 효과가 있었으며, 이는 pAMPK/AMPK ratio 증가, PEPCK와 phosphor-p38/p38 ratio 감소, PPARgamma의 발현을 통해 인슐린민감성을 개선 기전을 보고하 였다(Park et al., 2012).

식물 유래 항당뇨와 관련하여 amaranth의 종자 단백질 glutelin (Silva-Sanchez et al., 2008)과 콩 종실에 leginsulin (cysteinerich peptides)가 혈당조절 기작에 관여한다고 최근에 보고 되었지만(Kim et al., 2012), 수수 종자 단백질에 대한 연구 보고는 없다. 수수종자 단백질의 인체 건강 증진 효과에 대 한 연구 결과로는 프롤라민 단백질의 키모트립신 분해 수화 물이 혈압 저하 효과(Kamath et al., 2007)와 수수 종자에서 추출한 펩타이드 및 단백질이 항균 및 항바이러스 효과를 보고되었다(Camargo Filho et al., 2008; Mincoff et al., 2006). 작물 종자에서 유래된 펩타이드가 의학, 제약 및 식품학 계에서 건강 기능성 요인(기능성 펩타이드, bioactive peptides) 으로 밝혀지고 있으며(Farrokhi et al., 2008; Hartmann & Meisel, 2007), 기능성 펩타이드를 유발하는 식물 공급원은 밀, 콩, 옥수수, 벼, 버섯, 호박 및 수수 등으로 매우 다양한 작물의 종자에서 유래되고 있음이 보고되고 있어(Ng, 2004; Sarmadi & Ismail, 2010), 수수종자 단백질 및 펩타이드의 인체 건강 증진에 기능성 역할을 시사하고 있다.

SELDI-TOF MS (surface enhanced laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry)은 단백질 칩을 이용하여 펩타이드를 검출하고 정량화하는 질량분석기술이다. 단백 질 칩 표면의 크로마토그래픽의 화학적 물질분리 기능을 부여 함으로써, 특별한 물질 분리과정 없이 추출된 조시료(crude sample)의 화학적 특성에 따라 칩 표면에서 직접 분리하고 바로 질량분석을 하기 때문에 단시간에 대량의 시료를 분석 하는 high-throughput 프로테옴 방법으로 적용되고 있다. 하 지만 질량분석의 범위가 30 kDa 이하의 저분자 단백질에 제 한이 되며, 검출된 펩타이드를 동정하지 못하는 단점이 있지 만, top-down 방식의 펩타이드 프로파일링과 펩타이드 양 적 발현 비교가 가능하다(Issaq et al., 2002; Ndao et al., 2010). SELDI-TOF MS 기술의 적용은 각종 암을 포함한 다양한 질병의 조기 진단을 위한 혈청 및 혈장 단백질의 펩 타이드 프로파일링 및 바이오 마커 개발(Ndao et al., 2010; Petricoin & Liotta, 2004)로 시작되었다. 식물 연구에서 Phytic acid 함량이 낮은 쌀 계통에서 Phytic acid 연관 펩타이드 마커(8,642 Da) (Emami et al., 2010)와 포도 품종 식별을 위한 바이오마커가 SELDI-TOF MS 기법을 적용하여 보고 되었다(Povero et al., 2010). 국내 연구로서는 SELDI-TOF MS를 이용한 벼 종자 단백질의 펩타이드 분석으로 근연 관 계가 가까운 일품벼, 고아미2호, 고아미 3호의 판별이 가능 하였으며, 각 품종별 바이오마커를 선발하였으며(Park et al., 2013), 수수종자의 펩타이드 프로파일링을 위한 SELDI-TOF MS 분석조건 최적화 연구가 선행되었다(Park et al., 2013).

현재까지 식물 및 종자 펩타이드의 프로파일링에 관한 연 구는 매우 미진하다. 펩타이드 프로파일링은 단백질 프로파 일링의 연구 방법적 역할과 같이 분자량이 10 kDa 이하의 저분자 단백질 즉, 펩타이드의 양적 또는 질적 형질을 특성 화 할 수 있으며, 외적 내적 환경변화 또는 식물종간 차이에 대한 펩타이드의 양적발현 양상의 변화를 측정함으로써 특 이 발현 펩타이드를 선발할 수 있다. 본 연구는 혈당강하 수 수 종자의 펩타이드를 탐색하여 특성화하고, 특이 발현 펩 타이드를 선발하기 위하여, 농촌진흥청에서 선발된 혈당강 하 수수 7품종과 대조품종 5품종에 대한 종자 펩타이드 프 로파일링을 SELDI-TOF MS 기법을 활용하여 실시하였다.

재료 및 방법

시료 및 측정장비

본 과제의 혈당강하 수수품종의 종자 저분자 단백질 프로 파일링 및 펩타이드 마커군 탐색에 사용된 수수 종자는 2011년 농촌진흥청에서 육성된 혈당강하 관련 육성 수수 계통 12종으로 혈당강하 수수 7계통: 135001, 135002, 135003, 135007, 135028, 135030, 135029, 및 비 혈당강하 대조구 수수 5계통 : 135004, 135005, 135006, 135008, 135009으 로 하였으며, 0.5 mm로 균일하게 마쇄하여 4°C에서 저장 한 시료를 사용하였다(Fig. 1). 단백질 함량 측정에는 UVSpectrophotomater (MECASYS, Korea)를 사용하였고, 펩 타이드 분석에는 SELDI-TOF MS (BIO-RAD, USA)을 사 용하였다.

http://static.apub.kr/journalsite/sites/kjcs/2014-059-03/A0350590307/images/KJCS-59-252_F1.jpg
Fig. 1.
Inhibition effect of α-glucosidase in selected 12 sorghum resources (hypoglycemic soghum 7 lines : 135001, 135002, 135003, 135007, 135028, 135030, 135029, Non-hypoglycemic soghum 5 lines: 135004, 135005, 135006, 135008, 135009).

단백질 추출 및 단백질 정량

총 단백질 추출은 미세하게 마쇄한 잡곡 종자 0.1 g에 12.5 mM sodium borate, pH 10.0 (2% β-ME, 1% triton X-100) 1 ml를 넣은 후 4°C에서 180 rpm으로 1시간동안 흔 들고, 4°C에서 12,000 x g로 10분 동안 원심분리하여 상등 액을 falcon tube에 옮겨 담는 과정을 3회 반복하여 얻었다 (Hamaker et al., 1995; Park & Bean, 2003; Park et al., 2013). 총 단백질 함량은 Bradford 분석법을 적용하였다(Bradford, 1976). 단백질 추출액은 펩타이드 프로파일링을 위한 SELDI-TOF MS에 즉시 분석되었다. SELDI-TOF MS 분석의 반복은 단 백질 추출 6반복을 두어 실시하였다.

수수종자 펩타이드 프로파일링

펩타이드 분석시료 전처리

수수종자 펩타이드 프로파일링의 분석은 Park et al. (2013) 의 방법에 따라 실시되었다. 수수 종자 단백질 추출 시료를 시료 바인딩 버퍼에 20배 희석한 후 4°C에 보관한다. 단백 질 칩의 최적화를 위하여 시료 바인딩 버퍼를 200 ul를 취 하여 well에 첨가하여 실온에서 250 rpm으로 5분 교반 후 바인딩 버퍼를 제거하였다. 위와 같은 방법으로 1회 반복을 하였다. 바인딩 버퍼가 제거된 단백질 칩에 희석된 단백질 시료를 150 ul 취하여 well에 첨가하여 실온에서 30분간 250 rpm으로 교반하였다. 단백질 칩에 결합이 안 된 단백질의 세정은 바인딩 버퍼 200 ul를 취하여 well에 첨가하여 실온 에서 5분간 250 rpm으로 흔들어 실시하였다. 이와 같은 방 법을 2회 반복하였다. HPLC용 증류수로 2회 세정 과정을 반복하여 남아있던 바인딩 버퍼를 제거하였다. 단백질 칩을 완전히 건조시킨 후 EAM를 1 ul씩 첨가하여 결정체를 형 성하도록 하였다. EAM 첨가를 1회 더 반복하였다. EAM은 1~15 kD를 분석에 용이한 CHCA (alpha-cyano-4-hydroxycinnamic acid)를 50% CHCA EAM solution (50% ACN, 0.25% TFA)으로 용해하여 실온에서 10,000 rpm으로 10분 간 원심분리 하여 상등액을 사용하였다. 최종적으로 EAM 이 첨가된 단백질 칩을 완전히 건조시킨 후 SELDI-TOF MS 분석을 실시하였다.

Data 선택

All-in-One peptide standard를 이용하여 질량을 보정하였 다. TOF 스펙트럼은 focus mass 5,000 Da, Matrix attenuation 1,000 Da, sample rate 800 MHz으로 low mass protein protocol 을 이용하여 생성하였다. 레이저 에너지의 설정은 EAM-CHCA 로 최적화하여 2,500 nJ을 조사하였다. Peak의 검출과 군집 분석은 ProteinChip Data manager를 이용하였다. 분자량 1,000 Da이하의 peak는 EAM에 의해 다른 화학적 물질로 오염이 되어 제거하였다. 스펙트럼는 1,000 Da에서 30,000 Da로 표 준화하였다. Peak 검출에서 first-pass peak 검출은 S/N의 비 율을 5, valley depth는 3으로 설정하였고, second-pass peak 의 검출은 S/N의 비율을 2, valley depth는 2의 신호로 설정 하였다. Estimated peak는 At cluster center로 설정하였다.

통계분석

품종 간의 peak 세기의 차이는 Biorad에서 제공하는 Protein Chip Data Manager Software을 이용하여 분석하였다. 단별 량 분석으로 Kruskal-Wallis test로 이용하여 p 값 0.01이하 인 경우를 품종간의 유의성을 판정하였다. 다별량 분석으로 p 값 0.01이하의 peak를 적용하여 supervised hierarchical heat map을 이용하여 12 계통 간 군집화를, 혈당강하군 간 군집화를 하였다.

결과 및 고찰

수수 종자의 펩타이드 프로파일링

농촌진흥청에서 육성된 혈당 강하 수수 7계통과 비 혈당 강 하 5계통 종자의 펨타이드 스펙트럼을 SELDI-TOF MS의 CM10 (weak cation exchanger)와 Q10 (strong anion exchanger) protein chip array을 활용하여 측정하였다(Fig. 1). CM10과 Q10 에서 분자량 10 kDa 이하의 수수 종자에서 검출된 펩 타이드 피크 스펙트럼은 수수 12계통에서 각각 다르게 나 타나, 계통 간 종자에서 유래되는 펩타이드의 양적 또는 질 적 발현에 차이가 있음을 제시하였다. 종자 펩타이드의 발 현이 품종 간 차이가 있다는 연구결과는 SELDI-TOF MS 기법을 활용한 쌀 품종비교에서 보고되었으며, 품종별 특이 적으로 발현하는 10 kDa 이하의 펩타이드가 품종 식별의 바이오마커로 선정되었다(Park et al., 2013). 분자량 10 kDa 이하의 펩타이드의 양적발현은 겔 기반 전기영동 기법으로 는 측정하기는 쉽지 않지만, SELDI-TOF MS 기법은 20 kDa 이하의 저분자 단백질을 검출하는데 큰 장점을 갖고 있어 (Issaq et al., 2002), 종자 및 식물체 유래 펩타이드의 양적 또는 질적 발현 및 탐색에 유효하게 적용될 것으로 사료된다.

수수 12계통 종자에서 검출된 펩타이드 피크의 종류(peak cluster), 질량(M/Z) 및 양적발현 정도(peak intensity)는 Table 1과 Table 2에 있다. 분자량의 범위가 2~20 kDa에서 검출된 수수 12계통 종자의 펩타이드는 CM10에서 104개 (Table 1)와 Q10 에서 95개였다(Table 2). 펩타이드 양적발 현에서 12계통 간 유의성(p < 0.01)을 보인 펩타이드는 CM10 에서 99개와 Q10에서 93개로 나타나, 20 kDa이하에서 검 출된 대부분의 펩타이드가 계통 간 양적 차이를 나타내었다 (Table 1과 2에서 굵은체로 된 피크 클러스터). 이러한 결과 는 수수 각 계통 종자에서 유래되는 특이적인 펩타이드가 존 재하며, 고유한 펩타이드 프로파일이 있음을 제시하고 있다. (Fig. 2)

Table 1.

Peptide peak cluster deteced on CM10 array on the mass range from 2 to 20 kDa in twelve sorghum lines (continue).

Peak clusterp-valueM/ZIntensityPeak clusterp-valueM/ZIntensity


meanCV (%)meanCV (%)meanCV (%)meanCV (%)

10.0000752030.860.0512.959.4400.0000085059.680.1811.579.5
20.0013552116.790.087.0176.4410.0000155104.650.0616.546.9
30.0000002231.530.0211.570.9420.0000165146.820.0325.249.5
40.0007202247.920.0610.447.1430.0000005167.720.0415.149.4
50.0088532373.000.1413.760.4440.0000005253.430.075.6129.6
60.0000322453.520.0316.357.3450.0000005296.010.0213.6124.6
70.0000282502.270.0611.265.6460.0000005319.180.039.9103.5
80.0000002520.070.0210.384.8470.0000005335.330.049.094.7
90.0000082795.060.118.3111.9480.0000005373.000.0410.9123.5
100.0000002845.370.0210.1102.9490.0000005393.640.018.5110.4
110.0342692889.540.1411.055.3500.0000015458.580.098.957.0
120.0000462924.840.0311.158.6510.0000005498.820.016.787.6
130.0000503047.320.207.869.1520.0000005519.050.027.1137.9
140.0000013132.890.0316.561.1530.0000005533.250.0410.2110.3
150.0000003155.530.1310.353.8540.0000005552.100.076.3103.7
160.0000573368.200.046.7105.0550.0000005630.260.319.986.5
170.0000413397.970.1013.7101.8560.0000005769.250.149.8107.9
180.0001043477.070.018.753.2570.0000015855.080.168.381.9
190.0008713496.330.039.163.8580.0000305905.050.295.986.2
200.0001003522.810.1213.640.4590.0000006009.900.058.181.6
210.0001433583.440.127.470.7600.0000006046.880.056.756.9
220.0000123611.090.0922.866.8610.0000006091.550.1111.5102.5
230.0000003677.230.1012.864.5620.0000006121.800.038.283.0
240.0432223791.460.0911.934.9630.0000006174.390.098.0101.8
250.0000473953.270.086.679.9640.0000166377.670.385.751.2
260.0244344019.570.037.540.1650.0000306540.030.023.057.7
270.0000034112.780.2715.858.4660.0000006590.450.085.577.0
280.0011174261.920.3214.346.0670.0000006638.200.193.2103.2
290.0000004434.370.158.672.5680.0000006773.500.2014.7112.1
300.0000024488.830.0219.859.1690.0000036902.260.174.880.4
310.0014994514.170.0811.957.9700.0001757043.690.365.341.9
320.0006254540.140.0417.530.7710.0000027194.890.162.679.0
330.0000524581.540.1115.842.9720.0000047317.420.124.389.0
340.0000114615.880.1411.855.8730.0001157876.930.083.796.5
350.0000094732.260.0442.955.9740.0000478002.890.363.242.3
360.0001854753.500.0818.035.6750.0000978184.170.253.840.1
370.0000034834.490.1214.744.4760.0017628401.000.252.161.6
380.0000004968.000.029.877.1770.0140888515.840.096.058.1
390.0000004993.260.1412.249.2780.0000168814.220.500.998.0
790.0000019106.290.281.5100.9920.00000313305.970.111.190.1
800.0000029414.560.114.061.4930.00000013462.140.181.0125.4
810.0000009555.340.254.869.6940.00000114098.340.520.7119.6
820.0000009848.300.084.3153.9950.00091914583.240.100.2134.4
830.00000010102.620.277.1101.3960.00321014792.680.510.274.7
840.00000010212.760.344.7120.9970.00003315443.990.580.3119.4
850.00151710672.910.260.786.4980.00000215933.440.770.484.4
860.00002210951.480.340.878.6990.00081116443.710.360.1112.5
870.00000811312.260.301.399.51000.10773116922.980.660.264.6
880.00002511627.910.040.3137.51010.00104817385.080.090.191.6
890.00002911902.150.290.484.41020.00002718310.020.810.382.0
900.00018012321.010.500.984.61030.00000019140.500.261.1148.1
910.00000012710.790.311.277.01040.00000019730.030.571.9154.8
†Cluster in bold represents significantly different peak clusters (p<0.01) among the twelve sorghum lines.
‡M/Z: mass per charge
Table 2.

Peptide peak cluster deteced on Q10 array on the mass range from 2 to 20 kDa in twelve sorghum lines.

Peak clusterp-valueM/ZIntensityPeak clusterp-valueM/ZIntensity


meanCV (%)meanCV (%)meanCV (%)meanCV (%)

10.0000012083.220.0911.794.3210.0000003129.360.024.795.0
20.0008592159.430.124.565.2220.0000023184.310.039.658.2
30.0000002181.000.0313.968.6230.0000563250.650.0229.346.9
40.0056502237.370.038.349.1240.0000013266.870.0710.246.6
50.0000042350.170.028.265.1250.0000013286.490.046.955.0
60.0000152383.760.0711.566.9260.0000843323.100.0410.137.1
70.0000012401.740.026.173.0270.0000003339.970.0219.781.1
80.0000062434.960.0810.955.2280.0000013358.460.1312.951.1
90.0000002489.510.025.0120.8290.0000003520.600.0315.293.5
100.0000002560.570.0724.288.2300.0000003593.910.037.884.8
110.0000002593.830.0210.2105.9310.0000073669.820.097.049.0
120.0000322608.780.025.665.9320.0000023723.740.013.3129.5
130.0000002645.470.039.386.3330.0000003808.910.0210.459.7
140.0000002690.620.027.774.5340.0000013934.910.267.428.3
150.0000022747.790.025.190.0350.0000004078.680.0133.9132.8
160.0000002907.950.0111.5113.5360.0000124105.500.1912.5107.4
170.0000052934.400.229.154.6370.0000154148.880.114.956.0
180.0196642966.740.155.575.8380.0000004210.700.048.178.4
190.0146883018.710.115.763.0390.0000004226.430.048.261.7
200.0000003063.570.015.6106.5400.0000014269.500.086.656.6
410.0000004423.360.047.044.2690.0007696712.160.071.380.6
420.0000004441.310.028.9107.3700.0000596792.840.191.1108.5
430.0000004457.490.025.5106.0710.0000037005.810.113.752.1
440.0000004537.120.014.780.1720.0000027207.540.042.252.5
450.0000024603.070.024.886.1730.0000017318.430.079.862.8
460.0000004625.820.013.791.9740.0000007677.720.121.0100.0
470.0000004679.030.015.5110.3750.0000007870.430.033.563.2
480.0000014733.660.0539.365.8760.0004118221.250.120.965.0
490.0000004747.970.0215.264.8770.0000008400.840.012.275.9
500.0002104769.370.019.239.3780.0000148515.080.035.545.5
510.0000014912.430.0816.246.2790.0000008769.820.131.875.9
520.0012044970.740.028.524.0800.0000129234.080.040.4111.5
530.0000004993.460.0216.493.9810.0000049664.660.131.0124.7
540.0000105051.080.107.740.8820.0000019909.450.332.586.9
550.0000005064.870.0418.058.3830.00000110102.780.384.869.6
560.0000025174.390.2310.342.1840.00000010629.360.102.062.5
570.0001485279.980.102.6109.0850.00000010816.780.401.567.0
580.0000005454.470.032.869.0860.00000311399.710.400.576.9
590.0000035727.540.031.869.7870.00005711962.760.300.367.4
600.0001135825.640.101.684.1880.00000012716.590.211.081.1
610.0000015947.510.032.9155.2890.00000012846.000.090.757.8
620.0000016002.470.054.784.7900.00000013471.900.230.5139.3
630.0000006187.520.345.496.8910.00095414020.210.230.1109.5
640.0000466281.790.025.1145.7920.00000014764.200.700.360.3
650.0000126298.970.014.1124.5930.00001616128.661.170.150.2
660.0000006348.100.063.694.3940.00000816803.580.320.253.4
670.0000006403.610.283.969.4950.00000219697.320.320.871.0
680.0000006518.520.172.680.5
†Cluster in bold represents significantly different peak clusters (p < 0.01) among the twelve sorghum lines.
M/Z: mass per charge
http://static.apub.kr/journalsite/sites/kjcs/2014-059-03/A0350590307/images/KJCS-59-252_F2.jpg
Fig. 2.
Peptide peak spectra of two protein chip arrays, CM10 (a) and Q10 (b) of SELDI-TOF MS in twelve sorghum lines. †hypoglycemic soghum lines, M/Z: mass per charge.

수수 종자의 펩타이드를 이용한 계통식별

수수 계통 간 펩타이드의 양적발현에서 유의성을 갖는 펩 타이드를 적용한 Heat map 분석은 각 수수 계통에서 높게 (붉은색, up-regulate) 또는 낮게(녹색, down-regulate) 발현 된 펩타이드를 잘 보여주고 있다(Fig. 3). 또한 Heat map은 유의성이 있는 펩타이드를 이용한 계통 간 근연관계(vertical grouping)를 보여주고 있다. 흥미로운 결과는 CM10과 Q10 모두에서 각 계통의 반복 간 근연거리가 가까운 위치에 모 여 있어, 이는 측정 반복 간 차이가 적었음을 의미하였다.

http://static.apub.kr/journalsite/sites/kjcs/2014-059-03/A0350590307/images/KJCS-59-252_F3.jpg
Fig. 3.
Heat map analysis using peaks of p < 0.01 detected on CM10 (A) and Q10 (B) arrays in twelve sorghum lines. †hypoglycemic soghum lines, M/Z: mass per charge

수수 12계통간의 근연거리를 이용한 군집분석에서 CM10 의 경우, 12계통은 크게 3개의 군집을 형성하였다. 계통번 호 ‘135001’, ‘135002’, ‘135003’, ‘135028’, ‘135029’, 및 ‘135030’이 한 군집을, ‘135004’와 ‘135009’가 두 번째 군 집을, ‘135004’, ‘135005’, ‘135007’ 및 ‘135008’이 세 번째 군집을 형성하였다. 흥미롭게도 혈당 강하 수수로 선정된 계 통 ‘135007’을 제외한 나머지 혈당 강하 수수 6계통 ‘135001’, ‘135002’, ‘135003’, 135028‘, ’135029‘, 및 ’135030‘이 한 군집으로 분리되었다는 것이다. 이러한 혈당 강하 계통의 군집은 Q10의 결과에서 더욱 뚜렷하게 나타났다. CM10에 서 비 혈당 강하 군집으로 분리된 ‘135007’이 Q10에서는 혈당 강하 계통 군집으로 형성하였고, 비 혈당 강하 계통들 이 다른 한 군집을 형성하였다. 이는 혈당 강하 계통과 비 혈당 강하 계통에서 특이적으로 발현되는 고유의 펩타이드 가 각각 존재함을 제시하고 있다.

혈당 강하 수수 종자의 특이적 발현 펩타이드 분석

수수 12계통을 혈당 강하 계통군과 비 혈당 강하 계통군 의 2군으로 분류하여 펩타이드의 양적 발현을 비교하였다. 분자량의 범위가 2~20 kDa에서 검출된 펩타이드 양적발현 에서 2군 간 유의성(p < 0.01)을 보인 펩타이드는 CM10에 서 26개와 Q10에서 29개였다. 그러나 p < 0.01의 유의성이 있는 펩타이드의 Heat map 군집 분석 결과는 CM10과 Q10 모두에서 혈당 강하군과 비 혈당 강하군을 군집화하지 못하 였다. 혈당 강하군과 비 혈당 강하군의 군집화는 p < 0.00001 의 유의성이 있는 펩타이드로 가능하였으며(Fig. 4), 혈당 강하 계통 ‘135007’은 CM10에서는 비 혈당 강하군으로 되 었으나, Q10에서는 혈당 강하군으로 군집화 되었다. p < 0.00001의 유의성이 있는 펩타이드는 CM10에서는 13개 (Table 3)와 Q10에서는 16개(Table 4)가 선정되었다.

http://static.apub.kr/journalsite/sites/kjcs/2014-059-03/A0350590307/images/KJCS-59-252_F4.jpg
Fig. 4.
Heat map analysis using peaks of p < 0.00001 between non-hypoglycemic and hypoglycemic sorghum lines detected on CM10 (A) and Q10 (B) arrays. M/Z: mass per charge.

Table 3.

Significantly different peptide peak (p < 0.00001) between non-hypoglycemic and hypoglycemic sorghum lines detected on CM10 array.

indexp-valueM/ZIntensity

meanCV (%)meanCV (%)

10.00000000462231.570.0211.571.2
20.00000010992520.070.0210.384.8
30.00000015252845.370.0210.1102.9
40.00000003513132.890.0316.561.1
50.00000002034993.240.0311.450.9
60.00000006045295.930.0213.6124.0
70.00000061905373.130.0310.8124.3
80.00000029085775.800.049.0104.9
90.00000984276173.690.057.9102.3
100.00000004036589.990.035.576.8
110.00000560617318.300.094.389.4
120.00000664719415.520.084.061.5
130.000002970312738.630.091.181.8
M/Z: mass per charge
Table 4.

Significantly different peptide peak (p < 0.00001) between non-hypoglycemic and hypoglycemic sorghum lines detected on Q10 array.

indexp-valueM/ZIntensity

meanCV (%)meanCV (%)

10.00000000422383.760.0711.566.9
20.00000000452401.740.026.173.0
30.00000000782907.950.0111.5113.5
40.00000005723063.570.015.6106.5
50.00000000023129.360.024.795.0
60.00000000193520.600.0315.293.5
70.00000010123593.910.037.884.8
80.00000001783808.910.0210.459.7
90.00000035124078.680.0133.9132.8
100.00000000674226.430.048.261.7
110.00000000364441.310.028.9107.3
120.00000000224537.120.014.780.1
130.00000000394747.970.0215.264.8
140.00000000974993.460.0216.493.9
150.00000000015065.000.0518.157.3
160.00000040206200.200.045.688.0
†M/Z: mass per charge

수수 혈당 강하 계통군에서 특이적으로 양적발현이 높은 펩타이드를 분석하기 위하여, 혈당 강하군과 비 혈당 강하 군 간 p < 0.00001 수준에서 유의성이 있는 29개 펩타이드 (CM10의 13개와 Q10의 29개)를 group scatter plot 으로 양 적발현을 비교 분석하였다(Fig. 5). 분석결과, 분자량이 5 kDa 이하에서 총 10종의 펩타이드가 선정되었다. CM10에서 는 분자량이 2231.57, 2845.42, 3132.64, 5296.52, 5375.51 Da을 포함한 5종이, Q10에서는 분자량이 2907.92, 3063.49, 3520.81, 4078.83, 5066.18 Da의 5종의 펩타이드가 수수 혈 당 강하 계통 군에서만 특이적으로 양적발현이 높은 펩타이 드로 선정되었다.

http://static.apub.kr/journalsite/sites/kjcs/2014-059-03/A0350590307/images/KJCS-59-252_F5.jpg
Fig. 5.
Group scatter plots of selected potential peptide biomarkers (p < 0.00001) for hypoglycemic sorghum detected on CM10 (A) and Q10 (B) arrays. Left : Non-hypoglycemic, Right : Hypoglycemic sorghums, |M/Z: mass per charge.

본 연구의 SELDI-TOF MS 기법을 활용한 수수 종자의 펩타이드를 분석한 결과, 수수 12 계통은 각각의 고유한 종 자 유래 펩타이드 프로파일과 유의성이 있게 발현하는 특이 적 펩타이드가 존재하였으며, 고유한 펩타이드 프로파일을 이용한 품종 및 계통의 식별과 선발에 적용할 수 있음을 시 사하고 있다. 또한 혈당 강하 계통과 비 혈당 강하 계통의 펩타이드 분석을 통하여 2개의 군이 서로 다른 군집으로 분 류되었으며, 이는 혈당 강하 계통과 관련된 특이적으로 발 현하는 일련의 펩타이드군이 있음을 제시하였다. 혈당 강하 계통에서 유의성(p < 0.00001) 이 있게 발현되는 펩타이드 를 29개 선정하였으며, 이중에서 펩타이드의 양적 발현이 혈당 강하 계통에서만 공통적으로 높은 10개의 펩타이드가 선발되었다. 따라서 이들 펩타이드는 혈당 강하 수수 품종 의 선발에 종자 펩타이드를 기반으로 한 바이오마커로 이용 할 수 있음을 제시하였다.

적 요

혈당 강하를 목적으로 선발된 수수계통의 종자 유래 펩타 이드의 양적, 질적 형질을 특성화하고 혈당 강하 수수에서 특이적으로 발현 펩타이드를 선발하기 위하여, 혈당 강하 수수 7계통과 비 혈당 강하 수수 5계통에 대한 종자 펩타이 드 프로파일링을 SELDI-TOF MS 기법을 활용하여 분석하 였다.

  1. 분자량의 범위가 2~20 kDa에서 검출된 수수 12계통 종자의 펩타이드는 CM10 (weak cation exchanger)에 서 104개와 Q10 (strong anion exchanger)에서 95개였 으며, 펩타이드 양적발현에서 12계통 간 유의성(p < 0.01)을 보인 펩타이드는 CM10에서 99개와 Q10에서 93개였다.

  2. 12계통 간 양적 발현에 유의적(p < 0.01) 펩타이드를 이용한 heat map 분석에서 수수 각 계통 종자의 고유 한 펩타이드 프로파일과 특이적으로 발현하는 펩타이 드를 제시하고 있다.

  3. 수수 12계통간의 근연거리를 이용한 군집분석에서 혈 당 강하 수수 7계통과 비 혈당 강하 수수 5계통이 서 로 다른 2개의 군집을 형성하였다.

  4. 혈당 강하 계통에서 유의성(p < 0.00001)이 있게 발현 되는 펩타이드를 29개 선정하였으며, 이중에서 혈당 강하 계통에서만 공통적으로 높게 발현된 10개의 펩타 이드(분자량이 2231.6, 2845.4, 2907.9, 3063.5, 3132.6, 3520.8, 4078.8, 5066.2, 5296.5, 5375.5 Da)를 선발하 였다.

사 사

이 논문은 2013년 정부(교육과학기술부)의 재원으로 한 국연구재단의 지원을 받아 수행된 연구임(NRF-2012R1A1 A2004847).

인용문헌(REFERENCES)

1
PS Belton and JRN Taylor, Trends in Food Science & Technology, Sorghum and millets: protein sources for Africa, 15; 94-98 (2004)
2
MM Bradford, Anal Biochem, A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding, 72; 248-54 (1976)
3
I Camargo Filho, DAG Cortez, T Ueda-Nakamura, CV Nakamura and BP Dias Filho, Phytomedicine, Antiviral activity and mode of action of a peptide isolated from Sorghum bicolor, 15; 202-8 (2008)
4
L Dykes and LW Rooney, J Cereal Sci, Sorghum and millet phenols and antioxidants, 44; 236-251 (2006)
5
K Emami, NJ Morris, SJ Cockell, G Golebiowska, QY Shu and AM Gatehouse, J Agric Food Chem, Changes in protein expression profiles between a low phytic acid rice (Oryza sativa L. Ssp. japonica) line and its parental line: a proteomic and bioinformatic approach, 58; 6912-22 (2010)
6
N Farrokhi, JP Whitelegge and JA Brusslan, Plant Biotechnol J, Plant peptides and peptidomics, 6; 105-34 (2008)
7
B R Hamaker, AA Mohamed, JE Habben, CP Huang and BA Larkins, Cereal Chem, Efficient procedure for extracting maize and sorghum kernel proteins reveals higher prolamin contents than the conventional method, 72; 583-588 (1995)
8
R Hartmann and H Meisel, Curr Opin Biotechnol, Food-derived peptides with biological activity: from research to food applications, 18; 163-9 (2007)
9
HJ Issaq, TD Veenstra, TP Conrads and D Felschow, Biochem Biophys Res Commun, The SELDI-TOF MS approach to proteomics: protein profiling and biomarker identification, 292; 587-92 (2002)
10
HS Jeon, IM Chung, KH Ma, EH Kim, SJ Young and JK Ahn, Korean J Crop Sci, Analysis of Phenolic Compounds in Sorghum, Foxtail Millet and Common Millet, 56; 361-74 (2011)
11
V Kamath, S Niketh, A Chandrashekar and PS Rajini, Food Chem, Chymotryptic hydrolysates of α-kafirin, the storage protein of sorghum (Sorghum bicolor) exhibited angiotensin converting enzyme inhibitory activity, 100; 306-311 (2007)
12
HY Ki, ES Seong, BK Ghimire, IM Chung, SS Kwon, EJ Goh, K Heo, MJ Kim, JD Lim, D Lee and CY Yu, Food Chem, Antioxidant and antimicrobial activities of crude sorghum extract, 115; 12341-239 (2009)
13
WS Kim, S Jang and HB Krishnan, Crop Sci, Accumulation of Leginsulin, a Hormone-Like Bioactive Peptide, is Drastically Higher in Asian than in North American Soybean Accessions, 52; 262-71 (2012)
14
PC Mincoff, DA Garcia Cortez, T Ueda-Nakamura, CV Nakamura and BP Dias Filho, Research in Microbiology, Isolation and characterization of a 30kD antifungal protein from seeds of Sorghum bicolor, 157; 326-332 (2006)
15
M Ndao, A Rainczuk, MC Rioux, TW Spithill and BJ Ward, Trends in Parasitology, Is SELDI-TOF a valid tool for diagnostic biomarkers, 26; 561-67 (2010)
16
TB Ng, Peptides, Antifungal proteins and peptides of leguminous and non-leguminous origins, 25; 1215-22 (2004)
17
J H Park, SH Lee, IM Chung and Y Park, Nutr Res Pract, Sorghum extract exerts an anti-diabetic effect by improving insulin sensitivity via PPAR-gamma in mice fed a high-fat diet, 6; 322-7
18
SH Park and SR Bean, J Agric Food Chem, Investigation and optimization of the factors influencing sorghum protein extraction, 51; 7050-4 (2003)
19
SJ Park, JY Park, YH Lee, SM Hwang, AR Kim, JY Ko and TW Kim, Korean J Crop Sci, Optimization of SELDI-TOF MS for Peptide Profiling of Sorghum Seed, 58(1); 50-56 (2013)
20
SJ Park, YH Lee, YJ Nam, BK Baik and TW Kim, Crop Sci, Peptide-Based Biomarker Discovery for Identification of Rice Cultivars using Surface Enhanced Laser Desorption/ Ionization Time-of-Flight Mass Spectrometry, 53; 987-95 (2013)
21
EF Petricoin and LA Liotta, Curr Opin Biotechnol, SELDI-TOF-based serum proteomic pattern diagnostics for early detection of cancer, 5; 24-30 (2004)
22
G Povero, M Papale, G Loreto, A Alpi, P Perata and E Loreti, Am J Enol Vitic, Identification of Grapevine Cultivar Biomarkers Using Surface-Enhanced Laser Desorption and Ionization (SELDI-TOF-MS), 61; 492-97 (2010)
23
Rural Development Administration, Development of Health Supplement Functional Material for Blood Sugar Decrease in Sorghum (2013)
24
BH Sarmadi and A Ismail, Peptides, Antioxidative peptides from food proteins: a review, 31; 1949-56 (2010)
25
MS Seo, JY Ko, SB Song, JS Lee, JR Kang, DY Kwak, BG Oh, YN Yoon, MH Nam, HS Jeong and KS Woo, J. Korean Soc. Food Sci. Nutr, Antioxidant Compounds and Activities of Foxtail Millet/ Proso Millet and Sorghum with Different Pulverizing Methods, 40; 790-7 (2011)
26
C Silva-Sanchez, AP de la Rosa, M F Leon-Galvan, BO de Lumen, A de Leon-Rodriguez and EG de Mejia, J Agric Food Chem, Bioactive peptides in amaranth (Amaranthus hypochondriacus) seed, 56; 1233-40 (2008)
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